Estandarización de los periodos morfogenéticos de la cardiogénesis de rata Wistar (Rattus norvegicus)
Palabras clave:
Rata Wistar, Embriología, Biología del desarrollo, Histología, Cardiogénesis, CorazónResumen
Objetivo: Describir los procesos morfogenéticos de la cardiogénesis de rata Wistar (Rattus norvegicus) de un bioterio de Cali (Colombia). Materiales y métodos: Estudio observacional descriptivo de corte transversal en el que se describieron los cuatro períodos morfogenéticos del desarrollo del corazón (campo cardiógénico, tubo cardiaco, asa cardiaca y tabicación y compartimentalización), a través de preparaciones histoquímicas en hematoxilina-eosina, de 76 embriones obtenidos de 22 hembras (una para cada día de gestación) desde el día nueve de desarrollo intrauterino. Resultados: Se realizó una aproximación comparativa entre los estadios gestacionales en días de la rata Wistar y las semanas de desarrollo del corazón en humanos, siendo para el campo cardiógeno 3 y 9, para el tubo cardiaco 4 y 11, para el asa cardiaca 4 y 12 y para tabicación y compartimentalización 5 y 13, respectivamente, con algunas variaciones respecto a la literatura reportada. Conclusiones: La identificación de los procesos morfogenéticos de la cardiogénesis de rata Wistar (Rattus norvegicus) de un bioterio de Cali, permitirá establecer una línea de base espaciotemporal para el estudio embrionario comparativo del desarrollo del corazón humano. La estandarización de los cuatro períodos de la cardiogénesis en un biomodelo de rata Wistar permitirá realizar estudios sobre la etiopatogénesis de las anomalías congénitas cardiacas mediante embriología comparada. La identificación de la edad gestacional en la que se dan los procesos morfogenéticos contribuye a la reducción del número de muertes innecesarias de biomodelos de rata Wistar en futuros estudios.
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Referencias
Cuellar L, Zafra D, Moreno S, Rosero D, Martínez C, Moreno F. Determinación del tiempo de gestación y desarrollo embrionario en rata Wistar (Rattus norvegicus) de un bioterio de Cali (Colombia). Salutem Scientia Spiritus 2019; 5(1):14-20.
Núñez-Patiño R, Yepes N, Solorza-Kasperson M, Moreno F. Cardiogénesis: Bases estructurales y moleculares a partir del modelo de rata Wistar. Salutem Scientia Spiritus 2017; 3(1):37-45.
Sadler TW. Embriología médica de Langman. Décimasegunda edición. Lippincot Williams & Wilkins: Barcelona; 2012
Carlson BM. Embriología humana y biología del desarrollo. Quinta edición. Elsevier: Barcelona; 2014.
Moore KL, Persaud TVN, Torchia MG. Embriología clínica. Décima edición. Elsevier: Barcelona; 2016.
Scott G. Biología del desarrollo. Séptima Edición. Editorial Médica Panamericana: Buenos Aires; 2006.
Arteaga S, García MA. Embriología humana y biología del desarrollo. Editorial Médica Panamericana: México; 2013.
Greenwald SE, Brown AG. Histology and staining. En: Zouridakis G y Moore J (editors). Biomedical Technology and Devices Handbook. CRC Press: London; 2004.
Witschi E. Development: Rat. In: Growth including reproduction and morphological development. Altman PL and Dittmer DS (editors) Fed Am Soc Exp Biol: Washington DC; 1962. p. 304-14.
Theiler K. The house mouse: atlas of mouse development. Springer- Verlag: NY; 1972.
O’Rahilly R. Early human development and the chief sources of information on staged human embryos. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 1979; 9(4):273-80.
Arráez-Aybar LA, Turrero-Nogués A & Marantos-Gamarra DG. (2008). Embryonic cardiac morphometry in Carnegie stages 15-23, from the Complutense University of Madrid Institute of Embryology Human Embryo Collection. Cells Tissues Organs. 2008; 187:211-20.
Krishnan A, Samtani R, Dhanantwari P, Lee E, Yamada S, Shiota K, Donofrio MT, Leatherbury L, Lo CW. A detailed comparison of mouse and human cardiac development. Pediatr Res. 2014; 76:500-7.
Ramkisoensing A, Pijnappels D, Askar SF, Passier R, Swildens J, Goumans MJ et al. Human embryonic and embrionario mesenchymal stem cells differentiate toward three different cardiac lineages in contrast to their adult counterparts. PLoS One. 2011; 6(9):e24164. DOI: 10.1371/journal.pone.0024164
McGinley AL, Li Y, Deliu Z, Wang QT. Additional sex combs-like family genes are required for normal cardiovascular development. Genesis. 2014; 52(7):671-86. DOI: 10.1002/dvg.22793
Guo Y, Zhang X, Wei Y, Guo C, Li R, Xu X et al. Cardiogenesisrelated gene expression during adipose mesenchymal stem cells differentiating into cardiomyocyte. Cell Research. 2008; 18(Suppl 151):350-9. DOI: 10.1038/cr.2008.241
Reichman DE, Park L, Man L, Redmond D, Chao K, Harvey RP, Taketo MM, Rosenwaks Z, James D. Wnt inhibition promotes vascular specification of embryonic cardiac progenitors. Development. 2018; 8:145(1). DOI: 10.1242/dev.159905.
Dupays L., Mohun T., Spatiotemporal regulation of enhancers during cardiogenesis. Cell. Mol. Life Sci. 2017; 74:257-265. DOI 10.1007/s00018-016-2322-y
Chan HC., Lau YT., Ding Q., Kit Li., Wong M., Shaw PC., Yaaye MM., Tsang ST. PinX1t, a Novel PinX1 Transcript Variant, Positively Regulates Cardiogenesis of Embryonic Stem Cells. J Am Heart Assoc. 2020; 9:e010240. DOI: 10.1161/JAHA.118.010240
Moorman A, Webb S, Brown NA, Lamers W, Anderson RH. Development of the heart: (1) formation of the cardiac chambers and arterial trunks. Heart. 2003; 89(7):806-14. DOI: 10.1136/ heart.89.7.806
Brand T. Heart development: molecular insights into cardiac specification and early morphogenesis. Dev Biol 2003; 258:1-19. DOI: 10.1016/S0012-1606(03)00112-X
Xu H, Baldini A. Genetic pathways to mammalian heart development: Recent progress from manipulation of the mouse genome. Semin Cell Dev Biol. 2007; 18(1):77-83. DOI: 10.1016/j.semcdb.2006.11.011
Gómez-Gómez M, Danglot-Banck C, Santamaría-Díaz H, Kinkel-Riera C. Desarrollo embriológico y evolución anatomofisiológica del corazón (Primera Parte). Rev Mex Pediatr. 2012; 79(2):92-101.
Salazar-García M, Sánchez-Gómez C, Contreras-Ramos A, Carrillo-Ávalos B, Revilla-Monsalve MC, Palomino-Garibay MA. Los segmentos cardíacos primitivos, su implicación en la cardiogénesis normal aplicada a la cardiología pediátrica. Arch Cardiol Méx. 2006; 76 (Suppl 4):46-57.
Anderson RH, Webb S, Brown NA, Lamers W, Moorman A. Development of the heart: (3) Formation of the ventricular outflow tracts, arterial valves, and intrapericardial arterial trunks. Heart. 2003; 89(9):1110-8. DOI: 10.1136/heart.89.9.1110
Suzuki HR, Solursh M, Baldwin HS. Relationship between fibronectin expression during gastrulation and heart formation in the rat embryo. Dev Dyn. 1995; 204(3): 259-77. DOI: 10.1002/aja.1002040305
Vincent SD, Buckingham ME. How to make a heart. The origin and regulation of cardiac progenitor cells. Curr Top Dev Biol. 2010;90(C):1-41. DOI 10.1016/S0070-2153(10)90001-X
Karimzadeh F., Opas M. Calreticulin Is Required for TGF-b-Induced Epithelial-to-Mesenchymal Transition during Cardiogenesis in Mouse Embryonic Stem Cells. Stem Cell Reports. 2017; 8:1299-1311
Manjarrez-Gutiérrez G, Camacho-Calderón N, Mercado-Camargo R, de Oca AB, Arvizu-Flores A, Hernández-Rodríguez J et al. Characterization of serotonergic cells in embrionario heart tissue. Cir y Cir (Cir Ciruj). 2009; 77(6):395-400.
Lopez III A., Wang S., Larina I. Embryonic Mouse Cardiodynamic OCT Imaging. J. Cardiovasc. Dev. Dis. 2020; 7:42. DOI:10.3390/jcdd7040042.
Wu M. Mechanisms of trabecular formation and specification during cardiogenesis. Pediatr Cardiol. 2018 ; 39(6): 1082–1089. DOI:10.1007/s00246-018-1868-x.
Asp M., Giacomello S., Larsson L., Wu G., Fürth D., Qian X., Wärdell E. et al. A Spatiotemporal Organ-Wide Gene Expression and Cell Atlas of the Developing Human Heart. Cell Press. 2019; 179 (7), 1647-1660. DOI: 10.1016/j.cell.2019.11.025.
Battista NA., Douglas DR., Lane AN., Samsa LA., Liu J., Miller LA. Vortex Dynamics in Trabeculated Embryonic Ventricles J. Cardiovasc. Dev. Dis. 2019, 6, 6; doi:10.3390/jcdd6010006
Jallerat Q., Feinberg AW. Extracellular Matrix Structure and Composition in the Early Four-Chambered Embryonic Heart. Cells 2020; 9:285. DOI:10.3390/cells9020285.
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